면역조직화학은 항체가 세포와 조직 내 항원(단백질)을 선택적으로 인식하는 데 초점을 맞춘 면역염색 기술입니다. 이 기술은 원래 앨버트 휴이트 쿤스 등이 1941년에 개발한 면역형광기술에서 발전했습니다. 시간이 지남에 따라 면역조직화학은 암 진단과 기초 연구에 매우 보편화되어 과학자들이 다양한 생물학적 조직에서 바이오마커와 차별적으로 발현되는 단백질의 분포를 탐구하는 데 도움이 되었습니다.
면역조직화학염색은 파라핀에 고정되어 포매된 조직이나 동결된 조직에서 시행할 수 있습니다. 표본 추출을 하기 전에, 조직이 어떻게 보존되었는지에 따라 일련의 다양한 단계를 거쳐야 합니다. 일반적인 단계로는 적절한 고정, 항원 회수, 1차 항체와의 배양, 그리고 2차 항체와의 후속 배양이 포함됩니다.
조직 고정은 조직 구조와 세포 모양을 유지하는 데 중요합니다. 고정제의 구성, 조직에 대한 고정제의 비율, 고정 시간은 최종 결과에 상당한 영향을 미칩니다. 10% 중성 완충 포르말린을 고정제로 주로 사용하며, 고정 시간은 일반적으로 실온에서 24시간입니다.
조직 샘플은 미세절단기를 사용하여 절편화되었습니다. 파라핀 포매 조직의 경우 일반적인 두께 기준은 4마이크론이고, 동결 절편의 경우 일반적으로 4~6마이크론 두께입니다. 절편의 두께는 매우 중요하며, 두께에 따라 항원의 시각화에 영향을 미칠 수 있으므로 면역조직화학염색을 시행할 때는 극히 주의해야 합니다.
고정된 조직 절편에서 항원 회수를 통해 항체가 항원 부위를 볼 수 있게 됩니다. 고정하는 동안 메탄 브릿지나 아미노기의 가교 결합이 형성되어 항체 결합을 방해할 수 있습니다. 항원 회수의 가장 일반적인 방법은 가열하고 완충액에 담가서 잠재된 항원성을 회복하는 것입니다.
표본에 형광 화합물, 금속 또는 효소로 표지된 항체를 사용하면 표적 항원을 효과적으로 구별할 수 있습니다.
직접적인 방법은 단일 단계 염색 방법인 반면, 간접적인 방법은 표지되지 않은 1차 항체가 먼저 표적 항원에 결합한 다음, 1차 항체에 결합하는 2차 항체를 첨가합니다. 간접법은 신호 증폭 효과로 인해 민감도가 더 높고 다중 항원 검출에 널리 사용됩니다.
검출되는 리포터 분자는 검출 방법에 따라 달라지는데, 가장 흔한 것은 크로모겐 검출과 형광 검출입니다. 발색 면역조직화학에서 항체는 일반적으로 효소와 결합되어 발색 기질이 존재할 때 눈에 보이는 색상을 생성합니다. 면역형광 검출에서는 항체에 형광단이 표시됩니다.
면역조직화학 기술은 진단 수술병리학, 특히 종양의 면역표현형 분석(예: 유방암 마커 식별)에서 큰 역할을 해왔습니다. 이 기술은 신경 과학 및 종양 진단을 포함한 광범위한 분야에 적용되어 연구자들이 특정 조직에서 단백질이 어떻게 작용하는지 탐구하는 데 도움이 됩니다.
면역조직화학에서는 과도한 배경 염색이나 불충분한 항원 표지 등 다양한 문제로 이어질 수 있는 여러 단계가 있습니다.
이러한 문제를 해결하려면 연구자들은 항체 품질과 기술을 최적화해야 합니다.
결론면역조직화학은 효과적인 검출 기술일 뿐만 아니라, 생물학적 조직 내 단백질 분포를 발견하고 이해하는 데도 도움이 됩니다. 기술이 발전함에 따라 임상 및 연구 분야에서의 응용 분야도 계속 확대될 것입니다. 당신은 이 기술이 열어줄 새로운 지평을 탐험할 의향이 있나요?