Ioannes Tsekos

The marine algae of Rhodos island, Greece

The main purpose of this research is to describe the distribution of marine algae along the shores of Rhodos island. In the investigated medio- and infralittoral zones, collections revealed 131 species distributed as follows: Chlorophyceae 22·9%, Phaeophyceae 20·6% and Rhodophyceae 56·5%. The ratio Rhodophyceae/Phaeophyceae is 2·7, similar to that found by Gerloff & Geissler (1974) and lower than in other parts of the Mediterranean sea (Feldmann, 1938; Giaccone, 1968).

Protoplasmaresistenz von Meeresalgen und Meeresanthophyten gegen Schwermetallsalze

SummaryPlasmatic resistances of 14Phaeophyceae, 32Rhodophyceae, 17Chlorophyceae, and 3 marine phanerogams were determined by immersion of thalli for 48 hours into concentration-graded solution series of MnSO4, ZnSO4, Cr2(SO4)3, VOSO4, and CuSO4 (10−6–1 mol/l).These limits of resistance in various solutions of manganese, zinc, chromium, vanadyl, and copper sulfates yield “resistance combinations” characteristic for the algal species, which are an expression of constitutional differences in the plasma of the algae tested. Resistance combinations of the marine algae investigated generally coincide with those of anthophytes. All the algae and marine phanerogams investigated by us are characterized by high resistance to manganese sulfate, the marine phanerogams also to zinc sulfate.The protoplasm of most of thePhaeophyceae investigated and of the three marine phanerogams shows the highest resistance to manganese sulfate (1 mol/l), whereas the protoplasm of theRhodophyceae is least resistant (10−1–10−2 mol/l). The protoplasm ofChlorophyceae occupies an intermediate position betweenPhaeophyceae andRhodophyceae in respect to the resistance limits.Plasmatic resistance limits to zinc, chromium, vanadyl, and copper sulfates of the marine algae investigated correspond to low, hypotonic concentrations.It may be guessed that the resistance to hypertonic concentrations—as, in our case, of MnSO4—is due to the formation of an “irreversibly coagulated surface layer”, which prohibits the salts from entering the ground plasm. Since this possibility is absent in lower, hypotonic concentrations (as, in our experiments, in ZnSO4, Cr2(SO4)3, VOSO4, and CuSO4) the protoplasm is killed, provided it is not hardy.ZusammenfassungEs wurde die Resistenz des Plasmas von 14 Phaeophyceen, 32 Rhodophyceen, 17 Chlorophyceen und 3 Meeres-Phanerogamen durch Einlegen der Thalli 48 Stunden lang in konzentrationsabgestuften Lösungsreihen von MnSO4, ZnSO4, Cr2(SO4)3, VOSO4 und CuSO4 (10−6–1 Mol/L) ermittelt.Diese Resistenzgrenzen in den verschiedenen Lösungen von Mangan-, Zink-, Chrom-, Vanadyl- und Kupfersulfat ergeben für die einzelnen Meeresalgen charakteristische „Resistenzkombinationen“, die der Ausdruck konstitutioneller Unterschiede des Plasmas der einzelnen Algen sind. Die Resistenzkombinationen der untersuchten Meeresalgen decken sich im allgemeinen mit denen von Anthophyten.Alle von uns untersuchten Algen und Meeres-Phanerogamen sind durch eine hohe Resistenz gegen Mangansulfat, die Meeres-Phanerogamen auch gegen Zinksulfat ausgezeichnet.Das Protoplasma der meisten untersuchten Phaeophyceen und der drei Meeres-Phanerogamen weist gegen Mangansulfat die höchste Resistenz auf (1 Mol/L), während das Protoplasma der Rhodophyceen die geringste Resistenz besitzt (0,1–10−2 Mol/L). Das Protoplasma der Chlorophyceen nimmt hinsichtlich der Resistenzgrenzen gegenüber Mangansulfat eine Stellung zwischen Phaeophyceen und Rhodophyceen ein.Die Resistenzgrenzen des Plasmas der untersuchten Meeresalgen gegen Zink-, Chrom-, Vanadyl- und Kupfersulfat liegen in niederen, hypotonischen Konzentrationen.Es ist zu vermuten, daß die Widerstandsfähigkeit gegen hypertonische Konzentrationen —wie bei uns in MnSO4 — darauf beruht, daß auf dem Plasma eine „irreversibel koagulierte Oberflächenschicht“ erzeugt wird, welche den Salzen ein weiteres Eindringen ins Binnenplasma verwehrt. Da bei niedrigeren, hypotonischen Konzentrationen — wie bei uns in ZnSO4, Cr2(SO4)3, VOSO4 und CuSO4 — diese Möglichkeit nicht gegeben ist, stirbt das Plasma ab, falls es nicht resistent ist.

Mikrospektralphotometrische Untersuchungen zum Speichermechanismus des amphoteren OxazinfarbstoffsPrune pure durch die lebende pflanzliche Zelle

ZusammenfassungElektrophorese-, spektralphotometrische und Ausschüttelversuche mit hydrophoben Solventien ergeben, daßPrune pure in der wässerigen Lösung, je nach dem pH-Wert, als einwertiges Kation, Zwitterion und Anion vorliegt. Im stark sauren Bereich (H2SO4) kann es noch als zweiwertiges Kation auftreten. Das Farbbasenmolekül ist nur in hydrophoben Lösungsmitteln nachzuweisen.Mit Zunahme der Farbstoffkonzentration in einer wässerigen Lösung (pH7) verschiebt sich das Absorptionsmaximum von λ = 640 nm nach λ = 580 nm. Diese Verschiebung beruht sehr wahrscheinlich auf einer Assoziation der Zwitterionen.In polaren Lösungsmitteln verschiebt sich das Absorptionsmaximum desPrune pure mit zunehmender Polarität in den längerwelligen Bereich.Rutin bedingt eine negative Metachromasie.Plasma und Zellkern der Oberepidermis vonAllium- cepa- Schuppenblättern zeigen nach Vitalfärbung mitPrune pure übereinstimmend ein breites Absorptionsmaximum bei ∼ 575 nm. Die Färbungsintensität übt keinen Einfluß auf die Lage des Maximums aus.Die mitPrune pure gefärbten vollen Zellsäfte der Unterepidermis besitzen ein Absorptions-maximum bei ∼ 675 nm.Aus der Lage der Absorptionsmaxima und der Form der Absorptionskurven wird geschlossen, daßPrune pure von Plasma und Zellkern als Farbbasenmolekül in apolaren Lipoiden gespeichert wird. Auf Grund der Dissoziationskonstante des Farbstoffs kannPrune pure nur von vollen Zellsäften aufgenommen werden. In den Unterepidermiszellen liegt eine Bindung an zellsafteigene Flavonole vor.SummaryElectrophoretic, spectrophotometric and shake out experiments withPrune pure show that in aqueous solution the dye is present according to pH as a univalent cation, zwitterion or anion. In strongly acid solutions (H2SO4) it may be present, too, as a bivalent cation. The dye base molecule is demonstrable only in hydrophobic solvents.In aqueous solution (pH 7.0) the absorption maximum shifts from λ = 640 nm to λ = 580 nm when the concentration of the dye is increased. The shift probably is due to an association of zwitterions.In polar solvents the absorption maximum ofPrune pure shifts towards the long wave area with increasing polarity of the solvent.Rutin causes negative metachromasy.After vital staining withPrune pure both the plasma and the nucleus of cells from the upper epidermis of scale leaves ofAllium cepa show a broad absorption maximum at λ ∼ 575 nm. The staining intensity has no influence over the position of the maximum.The “full” cell saps of cells from the lower epidermis give an absorption maximum at λ ∼ 675 nm when stained withPrune pure.From the position of the absorption maxima and the shape of the absorption curves it is concluded thatPrune pure is accumulated by the plasma and the nucleus as the dye base molecule into apolar lipoids.According to the dissociation constant ofPrune pure the dye can only be accumulated by “ful” cell saps. In cells of the lower epidermis it is bound to flavonoles present in the cell sap.

Versuch einer Feinstrukturanalyse der durch Chrysoidin verursachten Plasmaentmischungen in Oberepidermiszellen der Zwiebelschalen von Allium cepa

Summary In the cytoplasm of epidermal cells from the upper surface of the scale leaf of Allium cepa treatment with Chrysoidin G causes disintegrations resulting in spherical bodies stained yellow, which can be observed in the light microscope. These bodies are investigated by electron microscopy. Their morphogenesis is discussed with special reference to the close relationship to spherosome-like bodies. The former prove to be special regions of cytoplasm of a higher density to electrons. Although the disintegration bodies appear to be devoid of organelles, they show an accumulation of fibrillar, tubular, and vesicular elements, which are most often arranged around spherosome-like lipid bodies. The latter might function as centers of condensation. The electron microscope does not reveal any bordering membrane around the disintegration bodies, although in the light microscope they are optically sharply delimited from the surrounding cytoplasm. Neighbouring spherosomes in cells stained by Chrysoidin G show a tendency to fuse. In the electron microscope the supposed spherosomes show different stages of fusion, as well.

Mikrospektralphotometrische Untersuchungen an lebenden Zellen der Schuppenblattoberepidermen vonAllium cepa nach Toluidinblau 0- und Nilblauchlorid-Färbung

SummarySpectrophotometric and electrophoretic investigations show that in a physiological range of pH toluidine blue 0 and nile blue chloride predominantly exist as univalent cations. According to measurements performed by the present author the dissociation constants regarding the equilibrium between the univalent cation and the dye base molecule are 1.74 · 10−12 (pKa=11.76) for toluidine blue 0 and 2.81 · 10−10 (pKa=9.55) for nile blue chloride. At a constant pH the absorption maxima of aqueous solutions depend on the dye concentrations. Therefore one may assume that toluidine blue 0 and nile blue chloride form associations of univalent cations.The staining of typically “empty” cell saps and cell walls by toluidine blue 0 and nile blue chloride respectively, is a pure effect of concentration. In “empty” cell saps the dye concentration is remarkably increased by the ion trap mechanism; in cell walls an intense accumulation is caused by electro-adsorption (the maximum concentration being 1/500 to > 1/500) resulting in an association of univalent cations.In typically “full” cell saps accumulation is caused by the formation of salt-like complexes of the dye cation of toluidine blue 0 and nile blue chloride with flavonoles native to the cell. In cell saps of a lower flavonole concentration molecules as well as monomeric and dimeric cations of toluidine blue 0 and nile blue chloride exist along with their flavonole complexes.ZusammenfassungAus spektralphotometrischen und Elektrophorese-Untersuchungen geht hervor, daß bei Toluidinblau 0 und Nilblauchlorid im physiologischen pH-Bereich vorwiegend einwertige Kationen vorliegen. Nach eigenen Messungen betragen die Dissoziationskonstanten zwischen einwertigem Kation und Farbbasenmolekül für Toluidinblau 0 1,74 · 10−12 (pKa=11,76) und für Nilblauchlorid 2,81 · 10−10 (pKa=9,55).Die Abhängigkeit der Absorptionsmaxima wäßriger Farbstofflösungen konstanten pH-Wertes von der Farbstoffkonzentration deutet darauf hin, daß bei Toluidinblau 0 und Nilblauchlorid eine Assoziation der einwertigen Kationen erfolgt.Die Färbung der typisch „leeren“ Zellsäfte und der Zellwände mit Toluidinblau 0 bzw. Nilblauchlorid ist ein reiner Konzentrationseffekt. Die Farbstoffkonzentration wird bei den „leeren“ Zellsäften durch den Ionenfallenmechanismus, bei den Zellwänden durch Elektroadsorption stark erhöht (maximal 1/500 bis > 1/500), so daß eine Assoziation der einwertigen Kationen stattfindet.Bei den typisch „vollen“ Zellsäften beruht die Speicherung auf einer salzartigen Komplexbildung zwischen den Farbkationen von Toluidinblau 0 bzw. Nilblauchlorid und den zelleigenen Flavonolen.In den Zellsäften mit geringerem Flavonolgehalt liegen nebeneinander monomère, dimere Kationen und Moleküle des Toluidinblau 0- bzw. Nilblauchlorid-Flavonol-Komplexes vor.Aus spektralphotometrischen und Elektrophorese-Untersuchungen geht hervor, das bei Toluidinblau 0 und Nilblauchlorid im physiologischen pH-Bereich vorwiegend einwertige Kationen vorliegen. Nach eigenen Messungen betragen die Dissoziationskonstanten zwischen einwertigem Kation und Farbbasenmolekul fur Toluidinblau 0 1,74 · 10−12 (pKa=11,76) und fur Nilblauchlorid 2,81 · 10−10 (pKa=9,55).

cH-Schwellen der Uraninfärbbarkeit des Protoplasmas pflanzlicher Zellen

ZusammenfassungEs wurden die cH-Schwellen der Uraninfärbbarkeit des Protoplasmas von 14 Rhodophyceen, 6 Phaeophyceen, 3 Chlorophyceen, 2 Meeres-Anthophyten und 6 Land-Anthophyten, von denen 3 Halophyten waren, festgestellt. Es ergab sich folgendes:1.Das Protoplasma der Rhodophyceen wies die niedrigsten cH-Uraninschwellenwerte auf (pH 4,2–6,5), während das Protoplasma der Land-Anthophyten die höchsten cH-Uraninschwellenwerte zeigte (pH 6,6–8,2). Das Protoplasma der Phaeophyceen (pH 5,0–7,0), Chlorophyceen (pH 5,9–6,8) und der Meeres-Anthophyten (pH 6,2–6,4) nahm hinsichtlich der Uraninschwellen eine Zwischenstellung zwischen Rhodophyceen und Land-Anthophyten ein.2.BeiCladophora sp. konnten wegen des maximalen Speichervermögens der Plastiden (cH-Schwelle um pH 5,9) die Färbeschwellen des Plasmas und des Zellkernes nicht festgestellt werden.3.Die inneren Zellen der Thalli wiesen stets höhere Uraninschwellenwerte auf als die äußeren, die Zentralzellen höhere als die perizentralen, die Haar- und Rhizoidzellen jedoch die höchsten Uraninschwellenwerte von allen Zellen des Thallus. Wenn eine Differenz zwischen dem Zellkern und dem Plasma bestand, wies der Zellkern durchweg höhere Uraninschwellenwerte als das Plasma auf.4.Die jungen Zellen zeigten stets höhere Uraninschwellen als die alten. Dieses Phänomen wurde beiCeramium- undPolysiphonia-Arten und besonders deutlich bei den PhaeophyceenSphacelaria cirrhosa v. irregularis undHalopteris filicina beobachtet.5.Gequollenes Plasma und Tonoplasten wiesen blaugrüne Fluoreszenz bei pH-Werten auf, wo die normalen lebenden Zellen keine Grünfluoreszenz zeigten. Ähnlich verhielten sich die nekrotischen Zellen der Thalli, die als Ganze grün leuchteten. Unter den Meeresalgen neigten nurCladophora sp. undCystoseira abrotanifolia zur Bildung grün fluoreszierender Tonoplasten, während bei allen Land-Anthophyten grün fluoreszierende Tonoplasten beobachtet wurden.6.Die Stärkekörner der Rhodophyceen leuchteten nur bei den pH-Werten grün, bei denen auch das Protoplasma grün fluoreszierte.7.An einigen Rhodophyceen wurde die Umlagerung des Na-Fluoreszeins vom Plasma zum Zellsaft beobachtet.8.Wurde als Lösungsmittel des Na-Fluoreszeins gepuffertes Seewasser verwendet (pH 5,09), so ergab sich anAllium cepa- Zellen eine Umlagerung des Na-Fluoreszeins vom Plasma zum Zellsaft schon innerhalb 30–40 Minuten.SummarycH threshold values of uranin stainability were investigated in the protoplasm of 14 Rhodophyceae, 6 Phaeophyceae, 3 Chlorophyceae, 2 marine Anthophyta and 6 terrestrian Anthophyta, 3 of them halophytes. The following results were obtained:1.The protoplasm of Rhodophyceae yielded the lowest cH threshold values for uranin staining (pH 4.2–6.5), whereas terrestrian Anthophyta showed the highest values (pH 6.6 to 8.2). Protoplasms of Phaeophyceae (pH 5.0–7.0), Chlorophyceae (pH 5.9–6.8) and marine Anthophyta (pH 6.2–6.4) took an intermediate position between Rhodophyceae and terrestrian Anthophyta with regard to uranin thresholds.2.Stainability thresholds for protoplasm and nuclei could not be determined inCladophora sp. because of the pronounced storage capacity of the plastids.3.Inner cells always exhibited higher uranin thresholds than outer cells of thalli, central cells higher values than pericentral; hair and rhizoid cells, however, showed always the highest uranin threshold values of all of the thallus cells. Whenever there was a difference between nucleus and protoplasm, the nucleus showed the higher values.4.Young cells always had higher uranin thresholds than old ones. This phenomenon was observed inCeramium andPolysiphonia species and, most clearly, in the Phaeophyceous speciesSphacelaria cirrhosa v. irregularis andHalopteris filicina.5.Swollen plasma and tonoplasts displayed blue-green fluorescence even at pH values, at which normal, living cells did not show green fluorescence. Necrotic cells of thalli were similar, fluorescing green throughout. Among marine algae, onlyCladophora sp. andCystoseira abrotanifolia displayed a tendency towards formation of green fluorescing tonoplasts, whereas in all terrestrian Anthophyta they could be observed readily.6.Starch grains of Rhodophyceae showed green fluorescence only at those pH values, at which the protoplasm stained green too.7.A shift of sodium fluorescein from the plasma to the cell sap was observed in some Rhodophyceae.8.InAllium cepa cells, the use of buffered sea water (pH 5.09) as a solvent for sodium fluorescein resulted in a shift of the dye from the plasma to the cell sap within 30–40 minutes already.

Vital- und Fluoreszenzfärbestudien an Rhodophyceenzellen

ZusammenfassungDas Verhalten der Zellen von 16 Rhodophyceen-Arten des Golfs von Thessaloniki (Griechenland) wurde in einer fein abgestuften Pufferlösungsreihe von Vrtalfarbstoffen untersucht.a)„Leere“Zellsäfte. Die Zellsäfte von 8 Arten weisen diffuse, positiv metachromatische Färbung auf, die gelegentlich mit Vakuolenkontraktion verbunden ist. Mit Akridinorange wird eine kupferrote Fluoreszenzfarbe erhalten.Bei den Zellsäften von 6 Arten treten gleichzeitig diffuse, positiv metachromatische Färbung und Entmischungsaggregate auf.Bei diesen 14 Arten wird mit Rhodamin B weder Zellsaftfärbung noch Zellsaftfluoreszenz hervorgerufen. Nach Ammoniakbehandlung verschwinden sowohl die diffuse Färbung als auch die Entmischungsaggregate. Die diffuse, positiv metachromatische Färbung kommt nach dem Ionenfallenmechanismus zustande, während die Bildung von Entmischungsaggregaten durch eine Elektroadsorption an negativ geladenen Vakuolenkolloiden hervorgerufen wird.Für diese 14 Arten wurde durch Ermittlung der absoluten Färbeschwellen der Zellsäftein vivo eine saure Reaktion festgestellt.b)„Volle“Zellsäfte. Die Zellsäfte vonPolysiphonia tenerrima undPolysiphonia secunda. zeigen mit den kationischen Farbstoffen negativ metachromatische Färbung und Fluoreszenzfarben, die der negativen Metachromasie entsprechen. Mit dem elektroneutralen Rhodamin B wird ebenfalls eine Färbung erzielt. BeiPolysiphonia tenerrima entstehen außerdem Entmischungsaggregate. Nach Ammoniakbehandlung entfärben sich die Zellsäfte nicht. Diese Ergebnisse machen eine chemische Bindung zwischen den Farbstoffen und bestimmten Vakuolensubstanzen wahrscheinlich.c)Tonoplastenfärbung. Die „überlebenden“ Tonoplasten weisen eine kräftigere Farbstoffspeicherung als die Zellsäfte der intakten Zellen auf. Diese Erscheinung beruht darauf, daß das koagulierende Protoplasma durch den Tonoplasten nekrogene Speicherstoffe abgibt.d)Das Plasma und die Piastiden weisen nach Vitalfärbung einen grauen, gelben, grünen oder braunen Farbton auf, der auf einer Speicherung der in den lipoiden Bestandteilen gelösten Farbstoffmoleküle beruhen muß.Der IEP derZellwände aller Arten liegt um pH 3,0.SummaryThe vital staining properties of 16 species of Rhodophyceae, growing in the Gulf of Thessaloniki (Greece) were investigated by application of buffered solutions of some vital stains.a)“Empty”cell sap. In 8 species only diffuse positive metachromatic staining or fluorescence of the vacuole resulted. Vacuolar contraction was occasionally observed. The cell sap shows a red fluorescence when stained with acridine orange.In 6 more species diffuse staining plus aggregates occur, either simultaneously or after the diffuse staining has disappeared. This indicates the presence of substances which are able to adsorb the vital stain, although the ion trap mechanism for uptake operates also. The adsorptive binding has to be reversible since treatment of cells with those aggregates with ammonia leads to disappearance of these forms as well as of the diffuse staining.In these 14 species there is no staining or fluorescence with rhodamine B.In the above mentioned 14 species the absolute staining threshold indicates an acid cell sap.b)“Full” cell sup. The cell saps ofPolysiphonia tenerrima andPolysiphonia secunda show diffuse negative metachromatic staining and fluorescence, corresponding to negative metachromasy. There is also a staining with rhodamine B. InPolysiphonia tenerrima, too, aggregates occur. After treatment with ammonia both the diffuse staining and the aggregates persist. In these cells chemical binding of the vital stains to the vacuolar material occurs.c)Staining of tonoplasts. Most of the “surviving” tonoplasts accumulate the vital stains to a higher intensity than the intact cells. The coagulating protoplasm seems to release substances through the tonoplast into the vacuole. These substances cause the intensive accumulation of the vital stains.d)Cytoplasma and plastids have a gray, yellow, green or brown fluorescence after vital staining. Accumulation in plasma and plastids seems to be caused by a mechanism dependent on lipid solubility.The IEP of thecell wall was found to be close to pH = 3 for all species tested.

Mikrospektralphotometrische Untersuchungen an lebenden Zellen der Schuppenblattepidermen von Allium cepa nach Färbung mit den Triphenylmethanfarbstoffen Methyl-, Gentiana- und Kristallviolett

Summary Electrophoretic and spectrophotometric investigations have shown that in aqueous solution the cationic triphenyl methane dyes methyl violet 6B and crystal violet are present as molecules from pH 4.5—10.0 and are dissociated only at a pH below 3.0. Since maximum absorption of aqueous dye solutions with stable pH is dependent upon the concentration of the dye, it is supposed that the used dyes build associates. In shake out experiments with organic solvents methyl violet 6B and crystal violet show different absorption curves according to the polarity of the solvent. Rutin casues negative metachromasy. Except for high concentrations sodium nucleinat causes a positive metachromasy. The concentration of sodium nucleinate gives the actual site of the maximum. Comparing the given spectra results in the conclusion that an accumulation of electrical neutral dye particles of the cationic triphenyl methane dyes is possible in the protoplast as well as in the nucleus, principally in free polar lipids of the lecithine type and partly in free fatty acids. According to the conditions of dissociation for the dyes in question their intake is only made possible by “full” cell saps. The accumulation of “full” cell saps is due to a salt-like complex formation between dye particles and flavonoles genuine to the cell. A comparison between “in vivo” spectra of particles resulting from disintegration and the ”in vitro” results supposes a dyeflavonole complex; associates and free dye particles, respectively, are present in addition to this complex.

über den Bau und das Wachstum der ZellwÄnde vonCeramium circinatum (Kütz.) J. Ag.

Bei der RotalgeCeramium circinatum (Kutz.) J. Ag. wurde der Bau und der Verlauf des Wachstums der ZellwAnde cytochemisch und polarisationsoptisch untersucht. Folgendes wurde gefunden: 1. Die Zellwand besteht aus zwei Schichten, von denen sich die innere (1,7Μ dick) aus Zellulose, die Au\ere (1,4Μ dick) aus sauren Kohlenhydraten zusammensetzt. Die innere Schicht stellt die eigentliche Zellwand dar, die Au\ere eine Decklamelle. 2. Dieeigentliche Zellwand der jungsten Spro\-Fadenzellen uberzieht die ganze Zelle luckenlos, wAhrend die Zellwand dererwachsenen Zellen aus drei Teilen besteht;zwei Kappen — je eine im basalen und apikalen Pol — und einkonisch geformter Teil, der die ubrige ZellflAche umhullt. Die Entstehung der Zellwand der erwachsenen Zellen wird diskutiert. 3. Die Zellwand-Innenschicht zeigt eineGliederung in Lamellen, die nicht zueinander parallel liegen, sondernkonisch in der basalen ZellhAlfteineinandergefugt sind. In der apikalen HAlfte der Zelle liegen die Altesten Wandlamellen vor, die im Laufe der Zellstreckung von ihren Ansatzstellen an der Basis der Zelle abrei\en konnen und dann entlang der Zelle blind endigen. Der Gehalt an sauren Gruppen der Wandlamellen nimmt mit dem Alter zu. Die so aufgebaute Zellwand-Innenschicht deutet auf einBasiswachstum hin, wie das beiAntithamnion cruciatum der Fall ist (Kinzel 1956). 4. Die IntensitAt der Zellulosereaktion und der Doppelbrechung nimmt mit dem Alter der Zellen zu. Bei ganz jungen Spro\-Fadenzellen ist die Zellulosereaktion und die Doppelbrechung kaum zu erkennen. 5. Au\er den in axialer Lage befindlichen, stark lichtbrechenden Tupfelplatten liegen im apikalen Pol noch sieben solche vor, die kreisformig angeordnet sind.ZusammenfassungBei der RotalgeCeramium circinatum (Kütz.) J. Ag. wurde der Bau und der Verlauf des Wachstums der ZellwÄnde cytochemisch und polarisationsoptisch untersucht. Folgendes wurde gefunden:1.Die Zellwand besteht aus zwei Schichten, von denen sich die innere (1,7Μ dick) aus Zellulose, die Äu\ere (1,4Μ dick) aus sauren Kohlenhydraten zusammensetzt. Die innere Schicht stellt die eigentliche Zellwand dar, die Äu\ere eine Decklamelle.2.Dieeigentliche Zellwand der jüngsten Spro\-Fadenzellen überzieht die ganze Zelle lückenlos, wÄhrend die Zellwand dererwachsenen Zellen aus drei Teilen besteht;zwei Kappen — je eine im basalen und apikalen Pol — und einkonisch geformter Teil, der die übrige ZellflÄche umhüllt. Die Entstehung der Zellwand der erwachsenen Zellen wird diskutiert.3.Die Zellwand-Innenschicht zeigt eineGliederung in Lamellen, die nicht zueinander parallel liegen, sondernkonisch in der basalen ZellhÄlfteineinandergefügt sind. In der apikalen HÄlfte der Zelle liegen die Ältesten Wandlamellen vor, die im Laufe der Zellstreckung von ihren Ansatzstellen an der Basis der Zelle abrei\en können und dann entlang der Zelle blind endigen. Der Gehalt an sauren Gruppen der Wandlamellen nimmt mit dem Alter zu. Die so aufgebaute Zellwand-Innenschicht deutet auf einBasiswachstum hin, wie das beiAntithamnion cruciatum der Fall ist (Kinzel 1956).4.Die IntensitÄt der Zellulosereaktion und der Doppelbrechung nimmt mit dem Alter der Zellen zu. Bei ganz jungen Spro\-Fadenzellen ist die Zellulosereaktion und die Doppelbrechung kaum zu erkennen.5.Au\er den in axialer Lage befindlichen, stark lichtbrechenden Tüpfelplatten liegen im apikalen Pol noch sieben solche vor, die kreisförmig angeordnet sind.SummaryThe red algaCeramium circinatum (Kütz.) J. Ag. was investigated, by means of cytochemistry and polarization microscopy, for the structure and the course of development of the cell-walls. The following results could be established:1.The cell-wall consists of two layers, the inner (1,7Μ thick) made up from cellulose, the outer (1,4Μ thick) from acid polysaccharides. The inner layer corresponds to the cell-wall proper, the outer being a cover lamella.2.The cell-wall proper of the youngest filamentous shoot-cells forms an uninterrupted cover over the whole cell, whereas the cell-wall of fully grown cells consists of three parts: two caps, one in both the basal and the apical poles, and a conical part covering the rest of the cell surface. The formation of the cell-wall of fully grown cells is discussed.3.The inner layer of the cell wall shows a subdivision into lamellae, which are not in parallel arrangement but fitted into each other conically in the basal half of the cell. The apical half of the cell shows the oldest lamellae, which may be torn off their site of insertion on the basis of the cell, terminating abruptly somewhere along the cell surface. The content in acid groups rises with the age of the wall lamellae. This structure of the inner layer of the cell-wall indicates basal growth comparable to that ofAntithamnion cruciatum (Kinzel 1956).4.The intensities of cellulose reaction and birefringence rise with cell age. In very young filamentous cells both cellulose reaction and birefringence are nearly undiscernible.5.Besides the axially situated, strongly refractive pit plates, seven others are present, circularly arranged in the apical pole.