在科学研究中,对于微观环境的了解至关重要,尤其是在生物学和化学的领域。荧光寿命成像显微镜(FLIM)是一种强大的技术,它可以深入探测微环境中的秘密,为我们打开了一扇全新的视窗。这篇文章将探讨FLIM的工作原理,及其在研究中如何提供 invaluable insights。
FLIM的运作基本上是依赖于荧光分子的寿命,而非其发光强度来成像。换句话说,FLIM能够测量荧光分子的寿命,这与局部微环境的特征有密切关系。因此,FLIM可以有效排除因光源亮度变化、背景光强度或有限的光漂白现象所造成的误差。
荧光寿命依赖于微环境的特性,因此能够提供关于pH值、黏度和化学物质浓度的指示。
当一个荧光分子被光子激发后,它会以一定的概率通过多种衰减途径回落到基态,这其中至少有一条路径是通过自发辐射发出光子。在 FLIM中,荧光的衰减过程遵循ing exponential decay 将其描述为:
I(t) = I0 * e^(-t/τ)
其中,τ
表示荧光寿命。这里的关键在于,这一寿命测量与初始的荧光强度无关,从而使得在化学传感中能够进行非强度基准测量。
FLIM的影像获得过程中,影像中每个像素的强度由荧光寿命决定,这使我们能够观察即使在相同波长下也有不同衰减速率的材料之间的对比,并且进一步可以观察到如FRET成像中的衰减途径变化。
脉冲激发法被广泛应用于FLIM技术中。以超短激光脉冲激发荧光分子后,时间分辨的荧光会呈现指数衰减。然而,由于仪器响应函数的存在,实际测得的荧光信号不会是纯粹的指数衰减。为了解决这个问题,时间相关单光子计数(TCSPC)技术通常被应用,这一技术能够补偿光源强度及单光子脉冲幅度的变化。
使用商业化的TCSPC设备,荧光衰减曲线可以以高达405 fs的时间解析度进行记录。
另外一种技术为相位调制法。这种方法利用高频激光源,其荧光信号的相位变化与荧光分子的寿命直接相关,进而使得在活细胞研究中迎来更快的成像速度。
FLIM产生的数据需要透过适当的算法进行分析,以提取出纯粹的衰减曲线并估算出寿命。常用的技术有最小平方法迭代重新卷积,这个过程如何有效地将实际的测量与预期的模型进行匹配,是FLIM数据处理中的挑战之一。
这项技术的主要目标是通过最小化残差的加权总和来提取出纯粹的衰减曲线。
FLIM技术随着新型成像仪器的出现正得到日益广泛的应用,尤其是在活细胞内部和微环境变化的即时观察上。科学界对于透彻理解细胞内化学变化的渴望,不断推动着此技术的进步。
随着FLIM技术的发展,许多未解之谜将得以探索,未来的研究将如何进一步揭示微环境的奥秘呢?