在科學研究中,對於微觀環境的了解至關重要,尤其是在生物學和化學的領域。熒光壽命成像顯微鏡(FLIM)是一種強大的技術,它可以深入探測微環境中的秘密,為我們打開了一扇全新的視窗。這篇文章將探討FLIM的工作原理,及其在研究中如何提供 invaluable insights。
FLIM的運作基本上是依賴於熒光分子的壽命,而非其發光強度來成像。換句話說,FLIM能夠測量熒光分子的壽命,這與局部微環境的特徵有密切關係。因此,FLIM可以有效排除因光源亮度變化、背景光強度或有限的光漂白現象所造成的誤差。
熒光壽命依賴於微環境的特性,因此能夠提供關於pH值、黏度和化學物質濃度的指示。
當一個熒光分子被光子激發後,它會以一定的概率通過多種衰減途徑回落到基態,這其中至少有一條路徑是通過自發輻射發出光子。在 FLIM中,熒光的衰減過程遵循ing exponential decay 將其描述為:
I(t) = I0 * e^(-t/τ)
其中,τ
表示熒光壽命。這裡的關鍵在於,這一壽命測量與初始的熒光強度無關,從而使得在化學傳感中能夠進行非強度基準測量。
FLIM的影像獲得過程中,影像中每個像素的強度由熒光壽命決定,這使我們能夠觀察即使在相同波長下也有不同衰減速率的材料之間的對比,並且進一步可以觀察到如FRET成像中的衰減途徑變化。
脈衝激發法被廣泛應用於FLIM技術中。以超短激光脈衝激發熒光分子後,時間分辨的熒光會呈現指數衰減。然而,由於儀器響應函數的存在,實際測得的熒光信號不會是純粹的指數衰減。為了解決這個問題,時間相關單光子計數(TCSPC)技術通常被應用,這一技術能夠補償光源強度及單光子脈衝幅度的變化。
使用商業化的TCSPC設備,熒光衰減曲線可以以高達405 fs的時間解析度進行記錄。
另外一種技術為相位調製法。這種方法利用高頻激光源,其熒光信號的相位變化與熒光分子的壽命直接相關,進而使得在活細胞研究中迎來更快的成像速度。
FLIM產生的數據需要透過適當的算法進行分析,以提取出純粹的衰減曲線並估算出壽命。常用的技術有最小平方法迭代重新卷積,這個過程如何有效地將實際的測量與預期的模型進行匹配,是FLIM數據處理中的挑戰之一。
這項技術的主要目標是通過最小化殘差的加權總和來提取出純粹的衰減曲線。
FLIM技術隨著新型成像儀器的出現正得到日益廣泛的應用,尤其是在活細胞內部和微環境變化的即時觀察上。科學界對於透徹理解細胞內化學變化的渴望,不斷推動著此技術的進步。
隨著FLIM技術的發展,許多未解之謎將得以探索,未來的研究將如何進一步揭示微環境的奧秘呢?