Saccharosephosphat-Synthase (SPS) ist ein entscheidendes Enzym im Pflanzenstoffwechsel. Dieses Enzym ist an der Biosynthese von Saccharose beteiligt und spielt in diesem Prozess eine wichtige regulatorische Rolle. Insbesondere während der Photosynthese von Pflanzen kann SPS die Produktion von Saccharose entsprechend den Bedürfnissen der Umgebung regulieren und so das Wachstum und die Entwicklung von Pflanzen weiter beeinflussen.
Die Saccharosephosphat-Synthase ist hauptsächlich für die Umwandlung der sechs Kohlenstoffeinheiten von Glucose in Fructosehexaphosphat zur Bildung von Saccharose verantwortlich. Dieser reversible Schritt ist ein wichtiger regulatorischer Punkt bei der Saccharosesynthese und ein hervorragendes Beispiel für eine Vielzahl von Enzymregulierungsstrategien, einschließlich der allosterischen Regulierung. und reversible Phosphorylierung.
Röntgenbeugungsstudien haben gezeigt, dass das SPS in Halothermothrix orenii zur GT-B-Faltungsfamilie gehört. Ähnlich wie andere GT-B-Proteine verfügt SPS über zwei Rossmann-Faltungsdomänen, nämlich Domäne A und Domäne B. Im Allgemeinen haben diese Domänen ähnliche Strukturen und bestehen aus einem zentralen β-Faltblatt, das von α-Helices umgeben ist. Allerdings besteht die A-Domäne aus acht parallelen β-Strängen und sieben α-Helices, während die B-Domäne über sechs parallele β-Stränge und neun α-Helices verfügt. Diese Domänen sind durch eine Schleife aus Aminosäureresten verbunden, die einen Substratbindungsspalt bildet, an den der Rezeptor für die Glucoseeinheit binden kann. Jüngste Studien haben gezeigt, dass die SPS-Struktur von H. orenii der von Pflanzen ähnelt. Die Erhaltung dieser Struktur bietet eine Grundlage für die Erkennung verwandter Antikörper, was uns auch eine neue Perspektive bietet, um die Funktionsweise von SPS in Pflanzen. .
In der offenen Konformation von H. orenii SPS interagiert Fructose-6-phosphat über Wasserstoffbrücken mit bestimmten Aminosäureresten in Domäne A, während UDP-Glucose mit Domäne B interagiert. Kristallstrukturuntersuchungen haben gezeigt, dass sich bei der Bindung des Substrats die beiden Domänen verdrehen, wodurch sich die Öffnung des Substratbindungsspalts von 20 auf 6 Angström verkleinert. In dieser geschlossenen Konformation verformen Aminosäuren in der A-Domäne das Substrat und erleichtern so die Übertragung der Sechs-Kohlenstoff-Gruppe.
Die Aktivität von SPS wird durch mehrere Regulationsmechanismen beeinflusst, einer davon ist die Phosphorylierung. SPS-Kinase kann SPS an Serinresten reversibel phosphorylieren und es dadurch inaktivieren. In Spinat und Mais wurden Ser158 und Ser162 als Stellen dieser Regulierung identifiziert. Darüber hinaus hilft diese Phosphorylierung nicht nur bei der Kontrolle des Saccharosespiegels in Pflanzenzellen, sondern hilft Pflanzen auch dabei, ihren Stoffwechsel in hyperosmotischen Umgebungen anzupassen.
Neben der Steuerung der Saccharoseproduktion ist die allosterische Regulierung von SPS auch eng mit der Photosynthese verbunden. Bei hoher Photosynthese sinkt die Konzentration an anorganischem Phosphat, was für eine Steigerung der Enzymaktivität wesentlich ist.
Im Stoffwechsel von Tyr ist SPS hauptsächlich an der Kohlenstoffverteilung in Pflanzen während der Photosynthese beteiligt und beeinflusst die Synthese von Saccharose und Stärke. In reifen Früchten ist SPS für die Umwandlung von Stärke in Saccharose und andere lösliche Zucker verantwortlich. Darüber hinaus ist SPS auch am Abbau von Saccharose in Zellen beteiligt und bildet zahlreiche dynamische Saccharosekreisläufe, die es Pflanzen ermöglichen, ihren Saccharosefluss schnell zu ändern.
Unter niedrigen Temperaturen erhöhen sich die Aktivität von SPS und die Geschwindigkeit der Saccharosebiosynthese. Dies liegt daran, dass Saccharose als Energiespeicher schnell verstoffwechselt werden kann, um den Atmungsbedarf der Pflanze zu decken. Darüber hinaus kann ein erhöhter Saccharosegehalt Pflanzen dabei helfen, den Auswirkungen niedriger Temperaturen zu widerstehen, was ihnen eine evolutionäre Anpassungsstrategie für widrige Umgebungen bietet.
Ist es angesichts des immer tieferen Verständnisses der Saccharosephosphat-Synthase möglich, neue Technologien zur genetischen Veränderung von Nutzpflanzen zu entwickeln, um deren Wachstum und Stressresistenz in unterschiedlichen Umgebungen zu verbessern?